前言。
溶 酶 體它是被細胞內膜包裹的細胞器，富含水解酶和蛋白酶，主要負責細胞內外物質的降解、吞噬和消化。 溶酶體生成機制主要分為以下三個步驟：
內吞作用：細胞通過內吞作用將細胞外或細胞內物質包裹在膜囊中，形成內體。
2.早期溶酶體的形成：內體被送到內質網，與內質網的囊泡結構（早期內體）融合，形成早期溶酶體。
3.晚期溶酶體的形成：早期溶酶體進一步轉運到高爾基體，並與高爾基體上的其他膜囊（包括溶酶體）融合，形成晚期溶酶體。
在細胞內，溶酶體主要負責垃圾清理和消化功能。 同時，溶酶體還參與訊號轉導、免疫反應和自 噬和其他生命活動過程。 溶酶體功能異常可能導致多種疾病的發生和發展，如痛風、類風濕性關節炎、白血病等。
內吞作用和溶酶體
引文：使用石墨烯基奈米材料在癌症治療中利用溶酶體
GNMS和基於石墨烯的DDSS進入細胞。
point
在吞噬作用在介質中，大氧化石墨烯被吞噬到吞噬體中並與溶酶體融合。
莫林介導內吞作用中、小氧化石墨烯奈米片和 GQDS 與細胞表面受體結合，並且：使內在化進入網格蛋白包被的囊泡，成熟為晚期內體並最終與溶酶體融合。
小的疏水性石墨烯片和薄片穿過質膜直接進入細胞質，並被封裝在自噬體中，隨後它們被自 噬在此過程中與溶酶體融合。
GQDS也可以由細胞膜洞穴介導內吞作用穿過細胞膜，這種內吞作用是通過在細胞膜中形成囊泡而發生的，囊泡可能與內體融合。
溶酶體功能實驗方法。
pH 值和溶酶體質量 2 變化。
使用現有的試劑，很難判斷溶酶體的數量或功能（pH值）的變化，因為只能判斷單一的螢光強度。 該試劑盒包含對溶酶體高度特異性並隨 pH 值表現出螢光波動的 Phlys Green 和不依賴 pH 值的 LysoPrime Deep Red。 通過結合這兩種染料，可以用相同的樣品測定溶酶體的pH值和量，從而可以詳細分析溶酶體功能。
溶酶體酸性 pH 檢測試劑盒-綠色深紅色 （Cat.編號L268）。
實驗例項。 使用巴弗洛黴素 A1 和 FCM 分析對溶酶體 pH 值變化進行成像
使用HELA細胞，檢測溶酶體酸性抑制劑巴弗洛黴素A1（BAF.）答1）治療期間溶酶體的量和pH值變化。LysoPrime Deep Red 的螢光幾乎不受 BAF 新增的影響A1，而 Phlys Green 是 BAFA1 證實了新增溶酶體中和作用後螢光的降低。 此外，它可以通過上游模式進行檢測。 因此，新增 baf雖然 A1 降低溶酶體功能，但它對溶酶體的數量沒有影響。
檢測條件：Phlys Green：EX = 488 nm，EM = 490 - 550 nm
LysoPrime 深紅（紫色）：EX = 633 nm，EM = 640 - 700 nm
檢測條件：Phlys Green（FITC濾光片）：EX=488 nm，EM=515-545 nm
lysoprime deep red (apc filter)：ex=640 nm,em=650-670 nm
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