SN T 5649 2023 動物源性食品中呋喃丹和3 羥基呋喃丹殘留的測定

Mondo 社會 更新 2024-02-05

中華人民共和國出入境檢驗檢疫行業標準

sn/t 5649-2023

呋喃丹和動物源性食品中的代謝物羥基硫丹殘留物的測定

液相色譜質譜質譜

determination of carbofuran and its metabolites residues 3-hydroxycarbofuran in foods of animal origin—lc-ms/ms method

以前的話

本檔案符合GB T 11-2020 《標準化工作指南 第一部分:標準化檔案的結構和起草規則》。

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本檔案由中華人民共和國海關總署提交並集中。

本檔案起草單位:中華人民共和國廣州海關、中華人民共和國南寧海關、中華人民共和國拉薩海關、中華人民共和國合肥海關。

本檔案主要起草人:習靜、李菊、李天勇、曹曉剛、徐娟、司璐璐、宋偉、吳淑嶽。

範圍

本檔案規定了測定動物源性食品中呋喃丹和代謝物3-羥基呋喃丹殘留物的液相色譜-質譜法。

本檔案適用於動物組織、雞蛋、牛奶、蜂蜜、蜂王漿、蜂膠和腸衣中呋喃丹殘留物和代謝物3-羥基呋喃丹的測定。

規範性參考文獻

以下檔案的內容通過正文中的規範性引用構成本檔案的基本規定。 其中,註明了帶有日期的參考文件,並且只有與該日期對應的版本適用於該文件; 對於未註明日期的參考文獻,文件的最新版本(包括所有變更通知單)適用於此文件。

GB T 6682 分析實驗室用水規範和試驗方法。

術語和定義

本文件中沒有需要定義的術語和定義。

操作方法摘要

用乙腈提取樣品中殘留的呋喃丹和3-羥基呋喃丹,分散固相萃取純化,液相色譜-質譜檢測,外標法定量。

試劑和材料

除另有說明外,所用試劑為分析純度,試驗用水應符合GB T 6682規定的一級水。

5.1 乙腈:色譜純。

5.2 甲醇:色譜純度。

5.3 甲酸:色譜純度。

5.4 氫氧化鈣。

5.5 無水硫酸鎂:在500馬弗爐中烘烤約4h,冷卻後存放在密閉容器中備用。

5.6 氯化鈉。

5.7 檸檬酸鈉二水合物。

5.8 檸檬酸二鈉-倍半水合物。

5.9 甲酸銨:高階純度。

5.10 5 MMOLL L 甲酸銨-01%甲酸水溶液:稱取0314 5 g甲酸銨在小燒杯中,加少量水溶解後轉移至1 000ml容量瓶中,精密加甲酸1ml,用水稀釋至刻度,混勻。

5.11 0.5%氫氧化鈣溶液:稱取5g氫氧化鈣,充分溶解並用水稀釋至1 000ml,濾過濾液,準備立即使用。

5.12克百威參考物質(C12H15NO3,CAS號1563-66-2):純度98%。

5.13 3-羥基克卡硫丹參考物質(C12H15NO4,CAS號16655-82-6):純度98%。

5.14克百威標準儲備溶液,1 000毫克公升。 精密稱取呋喃丹標準品10mg,加少量甲醇溶解,轉移至10ml容量瓶中,用乙腈定容,搖勻,-18避光儲存,保質期為6個月。

5.15 3-羥克羧化物標準儲備液,1 000 mg l。 精密稱取3-羥克克卡硫丹標準品10mg,加少量甲醇溶解後,轉移至10ml容量瓶中,用乙腈定容,搖勻,-18避光儲存,保質期為6個月。

5.16.混合標準中間溶液:測量1ml標準儲備溶液(5。14 對 515)、用乙腈稀釋,定型至10ml,與濃度等於100的標準中間體溶液混合0 mg L,-18 避光儲存,保質期為 1 個月。

5.17.混合標準工作溶液:準確量量混合適量的標準中間溶液(516) 空白基質稀釋至 0001 mg/l、0.002 mg/l、0.005 mg/l、0.010 mg/l、0.020 mg/l、0.050 mg l 和 0100 mg L 標準工作溶液,濃度為一系列,即用型。

乙 二 胺-n-丙基矽烷基化矽膠(psa):粒徑m~60m

十八烷基矽烷鍵合矽膠(c18):粒徑m~60m

5.20 微孔膜: 022 m,有機相。

儀器裝置

6.1.液相色譜-質譜質譜:配備電噴霧離子源(ESI)。

6.2.電子天平:電感為001 g 和 01 mg。

6.3 組織泥瓦匠。

6.4 均質機:10 000 r/min.

6.5個振動台。

6.6 渦旋混合器。

6.7支移液器:100 L 1 000 L。

6.8.離心機:4 000轉以上

6.9 高速冷凍離心機:12 000 rmin.

6.10 超聲波清洗機。

6.11 吹氮器。

標本的製備和儲存

7.1 牛肉、雞肉、豬肝、羅非魚、雞蛋、豬油。

取樣品中具有代表性的可食用部分500克,用紙巾母製成品搗碎,充分混合,放入乾淨的容器中。 密封並標記並儲存在-18以下。

7.2 蜂蜜。

取代表性試樣500 g,攪拌均勻,對於有結晶沉澱的樣品,將試樣置於密閉狀態下不超過60°C的水浴中,待試樣全部熔化後攪拌均勻,迅速冷卻至室溫。 融化時,應注意防止水分揮發,並將其放入乾淨的容器中。 密封並標記好,並在室溫下避光儲存。

7.3 牛奶,蜂王漿。

取代表性樣品500克,攪拌均勻,放入乾淨的容器中,密封並標記,並儲存在-18以下。

7.4 蜂膠。

取代表性樣品500克,冷凍-20年,然後在紙巾母中搗碎,充分混合,放入乾淨的容器中。 密封並標記並儲存在-18以下。

7.5 豬腸衣。

取500克代表性樣品,用剪刀剪成5公釐或更小的長度,用紙巾母搗碎,充分混合,放入乾淨的容器中。 密封並標記並儲存在-18以下。

檢測步驟

8.1 樣品提取。

8.1.1 牛肉、雞肉、羅非魚。

稱取 5 g 試樣(精確到 0.)。01 g)置於50 ml離心管中,加入乙腈10 ml,用均質機以10 000 r min勻漿20 s 30 s,然後取10 ml乙腈清洗均質機刀頭上的殘渣,混合乙腈提取物後,在渦旋混合器中混合提取20 s 30 s, 和4g無水硫酸鎂,1g氯化鈉,1g檸檬酸鈉二水合物,05g檸檬酸二鈉-倍半水合物,充分混合,置振盪萃取中10分鐘,以4 000r min離心5分鐘,取出1ml上清液純化。

8.1.2 豬肝、牛奶、豬油和豬腸衣。

稱取 5 g 試樣(精確到 0.)。01g)在50ml離心管中,加入10ml乙腈,渦旋混合並充分混合20秒30秒,加入4 g無水硫酸鎂1 g氯化鈉1 g檸檬酸鈉二水合物0.5 g檸檬酸二鈉鹽倍半水合物混合後,放入振盪器中10分鐘,以4 000 r分鐘離心5分鐘,取出1ml上清液進行純化(豬脂肪提取上清液在-18下冷凍1小時,除去冷凍脂肪)。

8.1.3個雞蛋,蜂蜜,蜂王漿。

稱取 5 克雞蛋、2 克蜂蜜和蜂王漿(精確到 0.)。01g),放入50ml離心管中,加入5ml水,渦旋混合器混合1分鐘,靜置5分鐘。 加入乙腈10ml,渦旋混合1分鐘,在振盪器上提取10分鐘,加入2g和3g氯化鈉渦旋混合1分鐘,以4 000r分鐘離心5分鐘,取出1ml上清液進行純化。

8.1.4 蜂膠。

權重 02 g 試樣(精確到 0.)。001g)在50ml離心管中,加入10ml乙腈,渦旋混合1分鐘,置超聲清洗器提取10分鐘,加入10ml05%Ca(OH)2水溶液,渦旋混勻2min,然後加入4g 6g氯化鈉,渦旋混合2 min,在0條件下以10 000r min離心10 min,取4ml上清液純化。

8.2 淨化。

8.2.1 牛肉、雞肉、羅非魚、豬肝、牛奶、豬油、豬腸衣、雞蛋、蜂蜜、蜂王漿。

拿1.3.將待淨化的液體分別轉移到內容物中150 mg無水硫酸鎂50 mg psa50 mg c18塑料離心管,渦旋並充分混合1分鐘,以12 000r min離心5分鐘,取上清液超過0用於LC-MS質譜的22 M有機相微孔膜。

8.2.2 蜂膠。

拿 81.4.將所有待純液體轉移到裝有除水劑和純化物料(每ml待純溶液150mg無水硫酸鎂、50mg PSA和50mg C18)的塑料離心管中,渦旋混合,然後以12 000 rmin離心5 min。 精密地將2ml上清液移入氮氣吹管中,加入1ml乙腈,在45水浴中吹氮後立即復溶至乾燥,渦旋並充分混合用於LC-MS質譜的22 M有機相微孔膜。

8.3 空白基質提取物。

通過進行試驗確定沒有被測成分的試樣,並將試樣壓成 81 和 82 次操作得到空白基質提取物。

8.4 測定。

8.4.1 液相色譜條件。

由於測試結果取決於所使用的儀器,因此無法給出液相色譜分析的一般引數。 設定的引數應保證在色譜分析時,被測組分能與其他組分有效分離,並給出以下引數供參考。

LC參考條件如下:

a) 列:c18150 mm2.1 mm(內徑)、粒徑m或同等學歷;

b)流動相:a:甲醇;B:5 mmoll 甲酸銨-01%甲酸水溶液,梯度洗脫,洗脫程式見表1;

c) 流量:03 ml/min;

d) 注射量:2 l;

e) 柱溫:45;

8.4.2 質譜條件。

質譜條件如下:

a) 電離方式:電噴霧電離(ESI);

b) 護套氣 (kpa): 24132;

c) 輔助氣體 (kpa): 6895;

d) 吹掃氣體 (kpa): 689;

e) 離子傳輸管溫度 ( ) 350;

f) 蒸發溫度 ( ) 300;

g) 掃瞄方式:正離子;

h)監測方式:多反應監測法(MRM);

i) 定量和定性離子對以及碰撞能 (EV) 如表 2 所示。

8.4.3 繪製標準工作曲線。

按照 8 取空白樣品1 和 82 處理。 在所得樣品溶液中,將呋喃丹和3-羥基呋喃與標準中間溶液(516)注入稀釋制得的混合標準工作液,按濃度從低到高的順序進行檢測,以定量離子峰面積為縱坐標,以標準工作液濃度為橫坐標繪製標準工作曲線。

8.4.4 定性測定。

關注 84.1 和 84.2.如果待測物質在樣品中的保留時間與標準工作溶液一致,則保留時間偏差為2在5%以內,且定性離子對的相對豐度(表示為強度相對於最強離子豐度的百分比)與濃度相當的標準工作溶液的相對豐度一致,相對豐度的允許偏差不超過表3的規定,各離子的訊雜比為3, 然後可以判斷樣品中的相應分析物。

8.4.5 定量測定。

對於標準工作溶液和樣品溶液的相同體積注射測定,待供試樣品溶液中呋喃丹和3-羥基呋喃丹的響應值應在標準曲線的線性範圍內,如果超過線性範圍,應在注射分析前稀釋。 關於呋喃丹和3-羥基硫丹物質的資訊見表A1.呋喃丹和3-羥基呋喃的多反應監測色譜圖見圖B1 和圖 b2。

8.5 空白測試。

除非稱量樣品外,均遵循上述步驟。

計算結果和演示

採用外標法定量,用色譜資料處理軟體或按式(1)計算樣品中呋喃丹和3-羥基呋喃丹的殘留量,從計算結果中扣除空白值。

式中:x——樣品中呋喃丹和3-羥基呋喃丹殘留物的量,單位為毫克/千克(mg kg);

c - 從標準工作曲線獲得的樣品溶液中測量組分的濃度,單位為微克/毫公升(g ml);

v - 樣品溶液的最終體積,單位為毫公升(ml);

m - 最終樣品溶液所代表的樣品質量,單位為克 (g)。

呋喃丹殘留物在GB 2763中定義為呋喃丹和3-羥基呋喃丹的總和,以呋喃丹表示。 因此,根據公式(2)計算樣品中呋喃丹的總殘留量:

其中:x總計 - 樣品中的總殘留物,以呋喃丹克數克表示,單位為毫克/千克(mg kg);

X克呋喃丹 - 樣品中呋喃丹殘留的量,單位為毫克/公斤(mg kg);

x3-羥基呋喃丹 - 樣品中3-羥基呋喃丹的殘留量,單位為毫克/千克(mg kg);

0.93 – 3-羥基呋喃丹與呋喃丹的係數。

計算結果保留兩個有效數字,當含量超過1 mg kg時保留三個有效數字。

定量限

牛奶中呋喃丹和呋喃丹3-羥基呋喃丹的定量限為0001 mg/kg;蜂膠中呋喃丹和呋喃丹3-羥基呋喃的定量限為005 mg/kg;牛肉、雞肉、肝臟、羅非魚、雞蛋、蜂蜜、蜂王漿、脂肪和腸衣中呋喃丹和呋喃丹3-羥基硫丹的定量限值為001 mg/kg。

11 **速率和精度。

該方法對牛肉、雞肉、豬肝、羅非魚、雞蛋、蜂蜜、蜂王漿、蜂膠、牛奶、豬油和豬腸衣基質進行了測試,不同基質中不同新增水平下**率的資料和精密度見附錄C表C1。

*從:

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